傳染性肌肉壞死病

病原型別：病毒(virus) 病原環境：主要於海水及半淡鹹水 (brackish and marine water) 病名(俗名) 最早發現者：2002年時於巴西第一次發生傳染性肌肉壞死病毒（Infectious Myonecrosis Virus, IMNV) 主要危害白蝦（南美白對蝦，L. vannamei）， IMNV 為一個全新的病毒(Lightner et al 2004; Poulos et al 2006) 之後於亞洲之印尼亦發生同樣疾病 (Senapin et al 2007) OIE 狀況：表列(Listed) 病原摘要：IMNV病毒顆粒為二十體直徑約40nm (fig. 1)，於離心下在cesium chloride之buoyant sensity密度為1.366g/mL，為雙股之RNA病毒其基因體為7,560bp。 人畜共通：無 病原分類：目前暫定為Totivirdae(科)中之Totivirus(屬) 疾病特性：主要以感染Penaeus vannamei 為主但於實驗人工感染下Penaeus stylirostis 及 penaeus monodon. 仍可成立。 感染器官及組織：病毒主要存於具有橫紋肌組織如肌肉或心肌(較少)其它如結締組成(connective tissues)，血球細胞 (hemocytes)及類淋巴組織中之實質細胞 (lymphoid organ parenchymal cells)等。 疾病型態及流行病學：可水平感染(horizontal transmission)如經污染水原及殘食病蝦等。 重垂直感染(vertical transmission )被認為極有可能，但尚未被實驗証明。 本病在一些商業雜誌上估計單於2002-2004年間損失已超過美金2,000萬元以上，且最近更多，單一巴西於近年來因IMNV感染蝦之損失已超過美金1億以上 (Nunes et al., 2004)。 臨床狀況及病理學 感染之病蝦特別於腹節部及尾扇部之肌肉會呈現出大區域之白色壞死，在一些個別病蝦一但有緊迫(stresses) 如捕捉或突然的鹽度或水溫之改變等，會呈現出壞死與體色變紅等情況。疾病發生時其高死亡率常常可持續數日。 病蝦於剖檢時常出現類淋巴器官比正常時肥大(hypertrophied)約3-4倍。 主要病變於肌肉(skeletal muscle )及淋巴器官(lymphoid organ) 如將病蝦之病變肌肉直接壓片於位像差顯微鏡下檢查可看出肌肉之橫紋消失(loss of the normal striations)同時可觀察到肌纖維之碎片。於淋巴器官中可見大量之淋巴器官腫節((lymphoid organ spheroids or LOS) 圍繞於正常淋巴器官tubules之間。

1、感染之病蝦特別於腹節部及尾扇部之肌肉會呈現出大區域之白色壞死。 2、於一般病理切片經H&E 染色觀察下可見：急性期(acute phase)可見到肌肉呈現凝固樣壞死(coagulative necrosis of striated muscle) 同時常伴隨有嚴重之水腫(marked edema)，但往往蝦隻常有急性期及一些老之病灶混合一起，所見有凝固樣壞死到液化壞死(liquefactive necrosis)同時伴隨有血球細胞(hemocytes)之浸潤與推積(infiltration and accumulation)。之後有些肌肉組織會被一些疏鬆之fibrocytes 及結締組織所取代，其間有hemocytes 及一些再生之肌纖維出現(presumed)。 不論於急性或慢性之病灶中於肥大之淋巴組織中可見淋巴器官腫節之推積，這些淋巴器官腫節(LOS)亦會出現於其它組織如鰓、心臟或神經索中。 3RT-PCR 方法： 使用Andrade et al 2007 所使用之方法 一般之RT-PCR Total RNA：使用組織部位以腹部之肌肉為佳，並以 High Pure RNA tissue extraction kit (Roche Biochemical) 抽total RNA 或使用invitrogen 之trizol亦可。 Nested RT-PCR 第一次RT-PCR 所使用之引子對為4587F and 4914R (5′-CGA CGC TGC TAA CCATACAA-3′ and 5′-ACT CGG CTG TTC GAT CAA GT-3′, respectively), 產物大小為328bp 反應使用 GeneAmp EZ rTth RNA PCR kit (Applied Biosystems), nest-PCR 所使用之引子對為 4725NF (5′-GGC ACA TGC TCA GAG ACA-3′) and 4863NR (5′-AGC GCT GAG TCC AGT CTT G-3′) 其產物為139bp 其它條件為可參考 Andrade 2007

目前無有效之治療方法

Poulos BT, Tang KFJ, Pantoja CR, Bonami JR, Lightner DV. Purification and characterization of infectious myonecrosis virus of penaeid shrimp. J Gen Virol, 87, 987–996, 2006. Nunes A.J.P., Cunha-Martins P. & Vasconselos-Gesteira T.C. (2004). Carcinicultura ameac¸ada. Rev. Panoram Aquic., 83, 37–51, 2004 (in Portuguese). Andrade TPD, Thinnarat Srisuvan, Tang KFJ, Lightner DV. Real-time reverse transcription polymerase chain reaction assay using TaqMan probe for detection and quantification of Infectious myonecrosis virus (IMNV). Aquaculture Vol 264: 9-15, 2007. Lightner, D. V., Pantoja, C. R., Poulos, B. T., Tang, K. F. J., Redman, R. M., Andreas, T. & Bonami, J. R. (2004a). Infectious myonecrosis (IMN): a new virus disease of Litopenaeus vannamei. In Aquaculture 2004 Book of Abstracts, p. 353. Baton Rouge, LA: World Aquaculture Society. Senapin S, Kornsunee Phewsaiya K, Briggs M, Flegel TW. Outbreaks of infectious myonecrosis virus (IMNV) in Indonesia confirmed by genome sequencing and use of an alternative RT-PCR detection method. Aquaculture 266: 32–38, 2007.

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