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羊隠孢子蟲感染症

英文名稱:Cryptosporidiosis in goats
作者:賴治民 | 建立日期:2017/07/04 | 最後更新:2017/07/04

1. 疾病描述

1. 病原型別:原蟲 (Protozoan) 2. 學名:隠孢子蟲 (Cryptosporidium parvum) 3. 病名/俗名: 4. O.I.E狀況:未表列 (non-Listed) 5. 通報動物傳染病:否 6. 人畜共通:為人畜共通傳染病。 7. 病原摘要: 8. 疾病特性:   隠孢子蟲廣泛存在於土壤及環境中,並對環境的改變及消毒劑較無感受性,因此,容易感染羊隻,造成仔羊的死亡。清除隠孢子蟲的唯一方式為充分清潔,使無污泥或糞便留存。另者,應防止其污染水源及食物,造成人之感染。在冷水中或較濕冷環境中,卵可以無感染能力的狀態下,存活數個月之久。而受感染之動物(牛、羊、綿羊)可以排出卵數月之久。 9. 疾病型態及流行病學:   隠孢子蟲對健康之動物並不致害,為局限性之感染,然而,當有其他病原或緊迫因子存在時,體內之隠孢子蟲就會造成嚴重的症狀。本病通常發生在新生仔畜上。但如果感染羊隻呈現有顯性之下痢,則死亡率就會非常高。一般認為,如果仔羊在出生後的前幾個小時被隠孢子蟲感染,就會有明顯的下痢症狀。   隠孢子蟲感染之潛伏期(pre-patent period, PPP) 約4天。在臨床上,常見大腸桿菌感染後之隠孢子蟲感染。C. parvum可在40% 之牛、綿羊報告病例中發現。而於一場之感染中,約28.5%的臨床病例可見隠孢子蟲卵。並且,在小於6個月的仔羊中,其蟲卵數量明顯比大於12個月的羊中多,一般認為是免疫力上升的原故。   以往,仔羊因下痢而死亡的常被認為是大腸桿菌感染所造成,近年來,隠孢子蟲所造成的下痢已逐漸被為為是山羊之仔羊下痢死亡之主因,尤其有營養缺乏、環境不良等其他因素存在時,本病更應該被考慮。 10. 臨床症狀及病理學: 臨床症狀及肉眼病變:   在羊隻中,隠孢子蟲感染可以有二種形式,一為顯性感染,此種形式能造成明顯的下痢情形,稱為新生仔羊下痢症候群 (neonatal diarrhoeic syndrome)。另一種則是隠性感染,動物可能會沒有任何症狀。但二種情形都會造成傳播。因此,感染羊隻可呈現無症狀、倦怠、厭食、腹痛或腹部不適至下痢。下痢便顏色不定,通常呈現白、粉白、灰白至黃色,同時可能有惡臭。   在輕微症狀之羊隻,其約3-5天後會自行恢復,但是有下痢者症狀會持續7-15天。其臨床期會排出大量之卵囊。在感染後2-4天,卵囊的排出會逐漸上升,而在感染後之5-8天,卵囊的排放量會達到最多,然後其量就急速下降,於感染後10-15天時,卵囊的排放就會消失。隠孢子蟲僅存活於空腸及迴腸上皮絨毛邊緣 (the brush border of enterocytes)。 顯微病變:   除在空腸及迴腸之上皮邊緣可見隠孢子蟲體外,其餘腸道並無明顯之病變。在感染部份,一般指為迴腸上皮,可見絨毛萎縮、融合及盲端 (blunting)。在成畜則無明顯病變。
隠孢子蟲僅在腸細胞上部或表面增生https://www.naro.affrc.go.jp/english/niah/em/files/crypto3.jpg
營光顯微鏡下之隠孢子蟲https://kswfoodworld.files.wordpress.com/2012/12/763px-cryptosporidium_parvum_01.jpg
隠孢子蟲(抺片) http://cal.vet.upenn.edu/projects/parasit06/website/images/Lab%2010/Cryptosporidium.jpg
組織切片下之隠孢子蟲,僅在細胞表面 https://upload.wikimedia.org/wikipedia/commons/e/e2/Cryptosporidiosis_-_very_high_mag_-_cropped.jpg
隠孢子蟲僅在細胞表面 http://vet.uga.edu/ivcvm/courses/vpat5215/digestive/week04/enteric/entericeight.htm

2. 診斷方式

• 病原體的檢測   利用腸道壓片以檢驗空、迴腸上皮是否有隠孢子蟲之蟲體,尤其是迴腸上皮。1997年Vieira 等指出,大腸部位也可檢出隠孢子蟲體。   最好的診斷方法為利用modified Ziehl Neelsen (MZN) 方式檢驗。利用紫外光源,以rhodamine (540-560nm) 的濾鏡觀察,可增幅其敏感度10倍到100倍。 分子生物學方法:   利用聚合酶鏈鎖反應檢測rRNA,beta-tubulin, TRAP-C1, TRAP-C2, ITS1, polythreonine repeat, dihydrofolate reductase及 mRNA 均可以檢查。其方法可見於Sulaiman 等 (1999)、Amar 等(2001)、Lowery 等 (2001)、Tanriverdi 等 (2002)及Hashimoto 等 (2006)、Jiang 及Xiao (2003)、Savin 等 (2008)及Smith 及 Nichols (2010)。

3. 治療方法

口服或靜脈注射藥物為現今知道最好的方式。氨基配醣體(aminoglycosides),尤其是paromomycin,被認為在小鼠及仔牛中,有效減少其卵之排出及感染時間,然而其效果在山羊中並未被証明。鹵夫酮乳酸鹽 (halofuginone lactate),以100 ug/kg 連續七日投予仔羊中,是有治療效果的,於Giadines 等 (2008) 的研究中,對罹病仔羊之下痢情形,死亡率及排出量,均有下降的效果。其他抗生素並無有效之報告出現。

4. 預防措施

(1) 由於並無任何抗微生物製劑可以殺滅隠孢子蟲,故最好的預防方式為給予小羊足夠的初乳,使其有良好的免疫力。在仔牛的研究中指出,未吃初乳的仔牛相較有吃適量初乳的仔牛有四倍的機會死亡,也有二倍的機會受感染。另外,乾淨無糞便殘留的良好環境,有助於減少仔羊被隠孢子蟲感染的風險。 (2) 適度的保温設施,有助於減少緊迫,並減少下痢的產生。 (3) 寄生蟲需要適度的濕度才能生存,故保持室內乾燥是降低寄生蟲存活率的最好方法。 (4) 適度的換氣有助於減少有毒氣體之存留,降低緊迫。 (5) 如果使用奶瓶或各類哺乳設備,則應考慮用刷子清潔,並進行滅菌。隠孢子蟲可能存在於唾液中,並經由共用設備造成傳染。 (6) 防止非相關人等進入牧場,有助於減少人將病原傳播到牧場中。 (7) 由於隠孢子蟲在感染場中有可能為常在,故引入新羊時,應隔離並進行觀察,以免造成爆發。 (8) 建議在抗生素治療無效時,找有診斷能力之獸醫師進行幫忙。 (9) 環境中利用5%之阿摩尼亞 (ammonia solution)消毒房舍,有助於破壞卵,尤其是又是加熱的溶液。 (10) 降低族群密度 (11) 仔羊與成羊分開飼養

5. 參考資料

1. Anderson, B.C., Cryptosporidiosis: A Review. Journal of American Vet Medicine Assn, Vol. 180:1455-1457, 1982. 2. Gay, C. & Bessor, T., Discussion on Feeding Colostrum, WSU, 1990. 3. Navin, T.R. & Juranek D.D., Cryptosporidiosis: Clinical,Epidemiologic, and Parasitologic Review, Reviews of Infectious Diseases Vol. 6:313-327, 1984. 4. Svatos, G., Pro-Immune 99 Adds Predictability to E. Coli Scours Control Programs, Topics in Veterinary Medicine, Vol, 1:12-19, 1990. 5. Fredicks G. 2002. Cryptosporidiosis and kid care. http://kinne.net/crypto.htm. Accessed date: 2015/10/23 6. I.M. Sulaiman, L. Xiao, A.A. Lal. 1999. Evaluation of Cryptosporidium parvum genotyping techniques. Appl. Environ. Microbiol., 65: pp. 4431–4435 7. C. Amar, S. Pedraza-Diaz, J. McLauchlin. 2001. Extraction and genotyping of Cryptosporidium parvum DNA from fecal smears on glass slides stained conventionally for direct microscope examination J. Clin. Microbiol., 39: pp. 401–403 8. Lowery C.J. Moore J.E., Millar B.C., McCorry K.A., Xu J., Rooney P.J. Dooley J.S., 2001, Occurrence and molecular genotyping of Cryptosporidium spp. in surface waters in Northern Ireland. J. Appl. Microbiol., 91: 774-779. 9. Tanriverdi S., Tanyeli A., Baslamisli F., Koksal F., Kilinc Y., Feng X., Batzer G., Tzipori S., Widmer G. (2002) Detection and genotyping of oocysts of Cryptosporidium parvum by real-time PCR and melting curve analysis. 10. Hashimoto A., Sugimoto H., Morita S., Hirata T., (2006) Genotyping of single Cryptosporidum oocyst in sewage by semi-nested PCR and direct sequencing. Water Res. 40: 2527-2532. 11. Jiang J., and Xiao L., (2003) An evaluation of molecular diagnostic tools for the detection and differentiation of human-pathogenic Cryptosporidium spp. J. Eukaryot. Microbiol. 50:542-547. 12. Savin C., Sarfati C., Menotti J., Jaouhari J., Wurtzer S., Garin Y.J., Derouin F., (2008) Assessment of cryptodiag of diagnosis of cryptosporidiosis and genotyping Cryptosporidium species. J. clin. Mi9crobiol., 46: 2590-2594. 13. Smith R.P., Chalmers R.M., Mueller-Doblies D., Clifton-Hadley F.A., Elwin K., Watkins J., Paiba G.A., Hadfield S.JU., Giles M., (2010) Investigation of farms linked to human patients with cryptosporidiosis in England and Wales Prev. Vet. Med. 94:9-17. 14. Noordeen F., Rajapakse RPVJ, Horadogoda N. U., Abdul-Careem M.f., Arulkanthan A., 2012. Cryptosporidium, an important enteric pathogen in goats – A review. Small Rumin. Res. 106: 77-82